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Neu5Gc ELISA KIT (N-羥乙酰神經氨酸)

品牌:NEWLF   
價格:2200/2800
規格:48T/96T
貨號:NL3622

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Neu5Gc ELISA KIT (N-羥乙酰神經氨酸)

品牌:NEWLF   
價格:2200/2800
規格:48T/96T
貨號:NL3622
應用:競爭法

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  • 用途

        

        本試劑盒用于測定樣品中 N-羥乙酰神經氨酸(Neu5Gc)的含量。

     

     


     

    實驗原理

     

        本試劑盒應用酶聯免疫競爭法測定標本中 N-羥乙酰神經氨酸(Neu5Gc)水平。用純化的 N-羥乙酰神 經氨酸(Neu5Gc)抗體包被微孔板,制成固相抗體,往包被單抗的微孔中加入 N-羥乙酰神經氨(Neu5Gc)和HRP 標記的 N-羥乙酰神經氨酸(Neu5Gc)抗原,使它們競爭結合,經過徹底洗滌后加底物 TMB 顯色。樣本顏色的深淺和樣品中的 N-羥乙酰神經氨酸(Neu5Gc)的含量呈負相關。用酶標儀在 450nm 波長下測定吸光度(OD值),通過標準曲線計算樣品中 N-羥乙酰神經氨酸(Neu5Gc)的含量。

     

     


     

    基本性能

     

             

            性能

    靈敏度

     

     

     

    1.75ng/L

     

    檢測范圍

     

     

    5ng/L-350ng/L

     

    特異性

     

    可檢測樣本中 N-羥乙酰神經氨酸(Neu5Gc)的的含量。且與其他類似物無明顯交叉反應.

     

    重復性

     

    板內,板間變異系數均《10%

     

     


     

    試劑盒組份及儲存

     

     

                中文名稱

    規格

    開封后保存條件

    ELISA 酶標板

     

    96T :  8 孔×12 條

    48T :  8 孔×6 條

    2-8℃ 90天

    標準品

    SI :320ng/L    S2:160ng/L

           S3:80ng/L    S4: 40ng/L   

    S5:20ng/L             

     

    2-8℃ 90天

    HRP標記抗體

     

    96T :  6mlx1

    48T 3mlx1

    2-8℃ 90天

    樣品稀釋液

     

    96T :  1.5mlx1

    48T 1mlx1

    2-8℃ 180天

    顯色劑A

     

    96T :  6mlx1

    48T :  3mlx1

    2-8℃(避光)  180天

    顯色劑B

     

    96T :  6mlx1

    48T  3mlx1

    2-8℃(避光)  180天

    終止液

     

    96T :   6mlx1

    48T :  3mlx1

    2-8℃ 180天   180天

    30倍濃縮洗滌液

     

    96T :  20mlx1

    48T 10mlx1

    2-8℃ 180天   180天

    說明書

    1份

     

    質檢報告

    1份

     

    密封袋

    1個

     

     

    說明;未拆封的試劑盒可以在2-8℃ 保存六個月.

     

     

    試劑盒所需自備物品。

     

     1.酶標儀(450nm波長濾光片) 

     2.高精度移液器,EP管及一次性吸頭:0.5-10μL, 2-20μL, 20-200μL, 200-1000μL 

     3.37℃恒溫箱 

     4. 雙蒸水或去離子水 

     5. 吸水紙 

     6. 加樣槽

     

    樣品收集方法(具體處理方法請咨詢

     

    1.  血清:用無菌管收集,室溫血液自然凝固10-20分鐘,2-8℃條件離心20分鐘左右  (2000-3000轉/分)仔細收集上清,保存過程中  如出現沉淀,應再次離心。

    2.  血漿:應根據標本的要求選擇EDTA、肝素鈉或檸檬酸鈉作為抗凝劑,混合10-20分鐘后,2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉/分),仔細收集上清,保存過程中如有沉淀形成應該再次離心。

    3.  尿液:用無菌管收集,2-8℃條件離心20分鐘左右(2000-3000轉/分)。仔細收集上清,保存過程中如有沉淀形成,應再次離心。

    4. 組織勻漿:用預冷的PBS (0.01M, pH=7.4)沖洗組織,去除殘留血液,稱重后將剪碎的組織與 對應體積的PBS(一般按1:9的重量體積比,比如1g的組織樣品對應9 mL的PBS,具體體積可根據實驗需要適 當調整,并做好記錄。推薦在PBS中加入蛋白酶抑制劑)加入玻璃勻漿器中,在冰上充分研磨。為了進一步 裂解組織細胞,可以對勻漿液進行反復凍融或超聲破碎。最后將勻漿液于2-8℃,5000×g 離心5-10分鐘取 上清檢測。

    5.  細胞提取液:貼壁 細胞用冷的PBS輕輕清洗,然后用胰蛋白酶消化,1000×g離心5分鐘后收集細胞。懸浮 細胞可直接離心收集。收集的細胞用冷的PBS洗滌3次。每106個細胞中加入150-200 μL PBS重懸(推薦在PBS 中加入蛋白酶抑制劑;若含量很低可減少PBS的體積)并通過反復凍融或超聲使細胞破碎。將提取液于2-8℃,1500×g離心10分鐘,取上清檢測。

    6. 細胞培養上清或其他生物體液;收集液體后于2-8℃,1000×g離心20分鐘,除去雜質及細胞碎片,取上清檢測。

     


     

    試劑盒注意事項

     

    1. 試劑盒從冷藏環境中取出應在室溫平衡 15-30 分鐘后方可使用,酶標包被板開封后如未 用完,板條應裝入密封袋中保存。 

    2. 濃洗滌液可能會有結晶析出,稀釋時可在水浴中加溫助溶,洗滌時不影響結果。 

    3. 各步加樣均應使用加樣器,并經常校對其準確性,以避免試驗誤差。一次加樣時間最好 控制在 5 分鐘內,如標本數量多,推薦使用排槍加樣。 

    4. 請每次測定的同時做標準曲線,最好做復孔。如標本中待測物質含量過高(樣本 OD 值大于標準品孔第一孔的 OD 值),請先用樣品 稀釋液稀釋一定倍數(n 倍)后再測定,計算時請最后乘以總稀釋倍數(n×5) 

    5. 封板膜只限一次性使用,以避免交叉污染。 

    6. 底物請避光保存。 

    7. 嚴格按照說明書的操作進行,試驗結果判定必須以酶標儀讀數為準. 

    8. 所有樣品,洗滌液和各種廢棄物都應按傳染物處理。 

    9. 本試劑不同批號組分不得混用。

     

    |  標本收集注意事項

     

    1. 若標本為勻漿組織:用丁醇:甲醇:水(5:25:70 V:V:V)配比出來的液體,替代PBS,其余操作一樣。
    2. 不能檢測含 NaN3 的樣品,因 NaN3 抑制辣根過氧化物酶的(HRP)活性。
    3. 標本采集后盡快進行實驗,若不能馬上進行試驗,可將標本放于-20℃保存,但應避免反復凍融。
    4. 我們羅列的是通用的樣本處理方法,無法涵蓋各種樣本,對于一些特殊樣本,建議實驗人員多參考已發表的文獻, 自行設計合理的樣本 處理方法。

     

     

    |  操作步驟

     

    1. 加樣:分別設標準孔、空白孔(空白對照孔不加樣品及酶標試劑,其余各步操作相同)、待測樣品孔。在酶標包被板上標準孔中加 50 微升,待測樣品  孔中先加樣品稀釋液 40μl,然后再加待測樣品 10μl(樣品最終稀釋度為 5 倍)。加樣將樣品加于酶標板孔底部,盡量不觸及孔壁,輕輕晃動混勻。
    2. 加酶:每孔加入酶標試劑 50μl,空白孔除外。
    3. 溫育:用封板膜封板后置 37℃溫育 60 分鐘。
    4. 配液:將 30 倍濃縮洗滌液用蒸餾水 30 倍稀釋后備用
    5. 洗滌:小心揭掉封板膜,棄去液體,甩干,每孔加滿洗滌液,靜置 30 秒后棄去,如此重復 5 次,拍干。
    6. 顯色:每孔先加入顯色劑 A50μl,再加入顯色劑 B50μl,輕輕震蕩混勻,37℃避光顯色15 分鐘.
    7. 終止:每孔加終止液 50μl,終止反應(此時藍色立轉黃色)。
    8. 測定:以空白孔調零,450nm 波長依序測量各孔的吸光度(OD 值)。 測定應在加終止液后 15 分鐘以內進行。 

      

    |  結果判斷

     

     1. 每個標準品和標本的OD 值應減去空白孔的OD值。

     2. 以標準品的濃度為橫坐標,OD 值為縱坐標,利用計算機軟件采用直線回歸的擬合方法創建標準曲線方程,通過樣本的吸光度(OD值),利用方程計算樣品的濃度值。

     3. 若樣本的OD值高于標準曲線上限,應適當稀釋后重測,計算濃度時應乘以稀釋倍數。

     

     

     |  示例曲線

     

     由于實驗操作條件的不同(如操作者、移液技術、洗板技術和穩定條件等),標準曲線的OD值會有所差異。詳情請看質檢報告.

     

     

      

       

     

     

     

     

     

     

     

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